Distribución geográfica de Dirofilaria immitis en perros de México.

Año XXII. Edición 129. Junio Julio 2025

Distribución geográfica de Dirofilaria immitis en perros de México

PALABRAS CLAVE: Dirofilaria immitis > microfilaria > desarrollo larval > caninos > vectores > nematodo > distribución geográfica

Roger Iván Rodríguez-Vivas,

Gabriela Janett Flota-Burgos,

Manuel Emilio Bolio-González.

Departamento de Salud Animal y Medicina Preventiva, Cuerpo Académico de Salud Animal.

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autónoma de Yucatán.

rvivas@correo.uady.mx

Introducción

La dirofilariosis cardiopulmonar es producida por el nematodo Dirofilaria immitis, perteneciente al orden Spirurida y a la familia Onchocercidae, que afecta a caninos y felinos domésticos y silvestres. Se transmite por la picadura de mosquitos culícidos pertenecientes a los géneros Aedes, Culex, Anopheles, Culiseta y Coquillettidi (Bolio-González et al., 2011).

La larva L₃ ingresa al hospedador por el canal de la picadura hasta migrar al tejido subcutáneo, en el que se desarrolla la L₄ a los 10-12 días. El desarrollo de L₄ a L₅ (gusanos juveniles) se realiza en el tejido muscular (50-70 días pos-infección). Los gusanos juveniles penetran las venas sistémicas y se transportan a las arterias pulmonares, donde continúan desarrollándose hasta gusanos adultos. Las filarias hembras adultas eliminan hacia la circulación periférica las microfilarias (L1), que infectan a los mosquitos cuando ingieren sangre del hospedador. El periodo prepatente es de alrededor de 6 meses, los adultos pueden vivir 5-7 años y las microfilarias en sangre tienen una vida media de 2 años (Rodríguez-Vivas y Rosado-Aguilar, 2023).

La enfermedad es endémica de zonas donde proliferan los mosquitos vectores (zonas templadas, subtropicales y tropicales de todo el mundo). El principal hospedador definitivo y reservorio de D. immitis es el perro, pero pueden infectarse otros cánidos silvestres (p. ej., zorros) (Bolio-González et al., 2011; Rodríguez-Vivas y Rosado-Aguilar, 2023).

En México, la presencia de D. immitis en perros (detección de microfilarias y de vermes adultos, detección de antígenos de hembras adultas, así como la respuesta serológica) y en mosquitos se ha reportado en la mayoría del territorio nacional, pero su distribución global no ha sido documentada, por tal motivo el objetivo del presente escrito es presentar la distribución geográfica de D. immitis en perros de México tomando principalmente como base las referencias científicas publicadas en revistas de alto impacto.

Metodología

Se realizó una búsqueda por computadora de la literatura publicada sobre la dirofilariosis cardiopulmonar en México, utilizando las bases de datos electrónicas de PubMed (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed), Google Scholar (https://scholar.google.com/) y tesis de universidades mexicanas, con términos de búsqueda que incluyen, entre otros, "Dirofilaria immitis", " dirofilariosis ", "perro", “PCR” “seroprevalencia”, “prevalencia” y “México”. La búsqueda se realizó en el mes de septiembre de 2024. La revisión incluye estudios publicados sobre dirofilariasis en México de enero de 1983 a septiembre de 2024. La mayoría de las publicaciones fueron escritas en inglés, aunque también se incluyeron estudios en español.

Resultados obtenidos en México

En la Figura 1, se consideraron las prevalencias (%) reportadas en el Cuadro 1 de acuerdo con los rangos 1-10%, 11-20%, 21-30% y ≥31%. Cuando existió más de un reporte de prevalencia (detección de microfilarias, vermes adultos y antígenos de hembras adultas) en cada estado de México, se consideró el valor promedio. En la Figura 1 no se incluyeron los reportes de seroprevalencia.

*En el estado de Chiapas se reportó un caso de D. immitis en un perro (Sánchez-Barragán et al., 2022).

Figura 1. Distribución de la prevalencia de Dirofilaria immitis en perros por estados de México.

Cuadro 1. Reportes de prevalencias de Dirofilaria immitis en perros en estados de México.

Seroprevalencia.

La detección de anticuerpos para el diagnóstico de la dirofilariosis por D. immitis es poco usado y en México existe un reporte del uso de inmunofluorescencia indirecta para detectar anticuerpos anti-D. immitis en Tabasco (Bautista-Garfias et al., 2001).

Detección de antígenos.

La prueba de antígeno ELISA se usa para detectar antígenos de hembras adultas de D. immitis. Se puede tener resultados negativos durante los primeros 5-8 meses de la infección, en casos exclusivos de machos y con baja carga de hembras. La detección de antígenos es una prueba de diagnóstico rápido y es el más usado por veterinarios en todo el mundo ya que es preciso y sencillo. Las pruebas rápidas de ELISA son ideales para uso en consultorios, clínicas y hospitales veterinarios. También esta prueba puede usarse para detectar varios agentes en solamente una prueba. Son altamente precisas, por ejemplo, tiene una sensibilidad de 98% y especificidad 100% (https://www.idexx.es/files/09-80924-02-snap-4dx-plus-test-accuracy-en.pdf).

Detección de microfilarias.

La prueba de antígeno ELISA se usa para detectar antígenos de hembras adultas de D. immitis. Se puede tener resultados negativos durante los primeros 5-8 meses de la infección, en casos exclusivos de machos y con baja carga de hembras. La detección de antígenos es una prueba de diagnóstico rápido y es el más usado por veterinarios en todo el mundo ya que es preciso y sencillo. Las pruebas directas (frotis directo, observación directa y gota gruesa) y de concentración (Knott modificada, capa flogística) son usadas para detectar microfilarias (L1) en sangre. La prueba de Knott modificada es más usada y con mayor precisión, ya que concentra las larvas y el uso de azul de metileno permite colorearlas para su identificación. En regiones endémicas es importante diferenciar las microfilarias de D. immitis y Acanthocheilonema reconditum (Rodriguez-Vivas et al., 1994; Bolio-González et al., 2011).

PCR para la detección de D. immitis.

Esta prueba es usada para detectar genes de D. immitis (Caro-Gonzalez et al., 2010). El método descrito por Rishniw et al. (2006) detecta la región espaciadora transcrita interna 2 del ADN ribosómico de D. immitis. Los métodos moleculares para el diagnóstico de nematodos filariales caninos basados en PCR específicas de especie, son más sensibles que las técnicas convencionales utilizadas en México (gota gruesa y técnicas de Knott) y por lo tanto, se usan con mayor frecuencia (Caro-Gonzalez et al., 2010). Además, la PCR permite el proceso de varias muestras en menos tiempo en comparación con las pruebas convencionales.

Presencia de parásitos adultos en la necropsia.

Cuando los animales fallecen la necropsia es importante para realizar el diagnóstico de D. immitis. Durante la misma es importante examinar cuidadosamente el sistema cardiopulmonar, ya que los vermes adultos se localizan generalmente en el ventrículo derecho y en la salida de la arteria pulmonar, produciendo una arteritis vellosa y obstrucción parcial del flujo sanguíneo hacia los pulmones.

Los vermes deben de ser colectados y conservados en alcohol al 70% para su identificación en el laboratorio. Es importante anotar el número de vermes y su localización anatómica. En México, el diagnóstico de vermes adultos ha sido reportado en Yucatán (Rodriguez-Vivas et al., 1994; Bolio-Gonzalez et al., 2007) y Querétaro (Cantó et al., 2011). Se sabe que el 35% de los perros con dirofilariosis no presentan microfilarias circulantes. Esto puede deberse a la presencia de parásitos inmaduros, de adultos de un solo sexo en infecciones leves, a la supresión de microfilarias con el uso de microfilaricidas o a la reacción inmunitaria del organismo animal. En algunas ocasiones las hembras adultas producen microfilarias que desaparecen espontáneamente después de un período de latencia y otras que nunca producen microfilarias (Rodriguez-Vivas et al., 1994). En ciertas ocasiones suele haber migraciones aberrantes de los adultos para localizarse en ojos, sistema arterial o cavidad abdominal (Bolio-González et al., 2011).

Discusión

Generalmente, la dirofilariosis se presenta en perros de más de 1 año. La tasa de transmisión de D. immitis es proporcional a la densidad de la población de mosquitos y al número de picaduras. Los mosquitos pueden albergar 1-3 larvas infectantes que son capaces de transmitir (Rodríguez-Vivas y Rosado-Aguilar, 2023). En Yucatán y Tabasco se identificaron a Ochlerotatus taeniorhynchus (Manrique-Saide et al., 2008) y a Culex quinquefasciatus (Torres-Chable et al., 2018) como potenciales vectores de D. immitis. Los estados de México que tienen mayores estudios reportados son Yucatán, Tabasco y Puebla.

La prevalencia de D. immitis en perros varía de acuerdo con la prueba usada, el lugar geográfico y la presencia de los mosquitos vectores.

Se ha visto que la enfermedad se presenta principalmente en climas cálidos y principalmente en las zonas costeras donde abundan mayor número de mosquitos transmisores (Caro-Gonzalez et al., 2010). En México, las prevalencias de D. immitis oscilan del 0.4% a 73.3%, con los mayores valores para Tabasco, Quintana Roo, Guanajuato y Coahuila. El diagnóstico se puede hacer desde la detección temprana de los signos y la historia clínica. Las técnicas de diagnóstico más usadas para detectar el parásito adulto o las microfilarias son frotis directo, gota gruesa, detección en capa flogística, Knott modificada, ELISA para detectar antígenos de hembras adultas, inmunocromatografía para detectar antígenos y detección de parásitos adultos en la necropsia. Para la detección de anticuerpos anti-D. immitis se puede emplear ELISA indirecta e inmunofluorescencia indirecta (Rodríguez-Vivas y Rosado-Aguilar, 2023). La mayoría de los reportes científicos en México se han realizado usando la prueba de la detección de antígenos por la metodología de ELISA.

Conclusiones

Se concluye que D. immitis en perros se encuentra distribuido en 22 estados de México, reportándose las mayores prevalencias en los estados de Tabasco, Quintana Roo, Guanajuato y Coahuila. La mayoría de los reportes científicos en México han empleado para la detección de antígenos la metodología de ELISA.